Projeto de pesquisa
Parecer da Comissão Científica
Aprovado
Projeto do CEBIMar
Dados do solicitante
Cassiano Riyu Kohori
Natureza do projeto
Projeto de formação discente
Mestrado
Marcelo Visentini Kitahara
Por favor, selecione
Pesquisadores ou docentes associados
Recursos
88887.510010/2020-0088887.510010/2020-00
Capes
Descrição do projeto
Aspectos genéticos do hidrocoral Millepora alcicornis em diferentes fases de branqueamento
23-08-2021
22-12-2022
O branqueamento em corais zooxantelados ocorre quando há quebra da relação simbiótica entre os corais e as algas dinoflageladas simbiontes. O rompimento desta relação resulta na perda da coloração do tecido, possibilitando a visualização do esqueleto branco do coral, o que aumenta a susceptibilidade dos corais a doenças e, caso a relação de simbiose não seja reestabelecida em um relativo curto espaço de tempo, a morte. Dentre os eventos de branqueamento de corais reportados no litoral brasileiro na última década, a espécie de hidrocoral Millepora alcicornis, que possui grande importância ecológica uma vez que é a única espécie de cnidário ramificante formador de recife ao longo da costa brasileira, mostrou-se como uma das espécies mais afetadas, sobretudo na região Nordeste. Neste contexto, o presente projeto visa realizar a prospecção da variação da comunidade bacteriana de M. alcicornis e, investigar as mudanças nos transcritos desta espécie antes, durante e pós-branqueamento, aumentando assim o conhecimento acerca das mudanças que ocorrem durante este fenômeno.
Branqueamento de corais, Millepora alcicornis, Transcriptoma, Microbioma
Metagenômica de bactérias de Millepora alcicornis
O DNA de todas as amostras será extraído através do kit Qiagen DNeasy Blood & Tissue, seguindo o protocolo do fabricante. O DNA extraído terá sua concentração e qualidade observada através de espectrofotômetro (NanoDrop 2000). O marcador 16S rDNA será amplificado via reação de polimerase em cadeia (PCR) utilizando os primers universais 27F e 519R (LANE, 1991; TURNER et al., 1999) com as concentrações e ciclagens utilizadas em Zanotti et al. (2020). Os produtos da PCR serão purificados através de beads magnéticas (Agencourt AMPure XP) seguindo o protocolo do fabricante e eluídos em 50µl de TE (10mM Tris HCl, 1 mM EDTA, pH 8,0). A concentração de amplicons purificados será determinada utilizando Qubit dsDNA BR Assay Kit. O preparo das bibliotecas será feito através do NEBNext Ultra II FS DNA Library Prep Kit e, posteriormente, serão mantidas congeladas até o sequenciamento. Antes do sequenciamento, cada biblioteca será quantificada por meio do Qubit dsDNA BR Assay Kit e seu tamanho será verificado utilizando eletroforese capilar (Bioanalyzer High Sensitivity DNA chip). O sequenciamento será feito através da plataforma Illumina no Centro de Facilidades de Apoio à Pesquisa (CEFAP-USP).
Transcriptoma de Millepora alcicornis
O RNA de cada amostra será extraído utilizando o Trizol Reagent (Invitogen, USA) de acordo com Chomczynski & Sacchi (1987) e posteriormente dissolvido em água livre de RNase. A pureza do RNA será verificada utilizando espectrofotômetro (NanoDrop 2000) e a concentração será determinada utilizando o fluorímetro Qubit através do kit RNA HS (High Sensitivity) ou BR (Broad Range). Entre 100 à 700ng de RNA serão utilizados para preparar as bibliotecas de cDNA através do kit Illumina TruSeq Strand mRNA LT Sample Prep, de acordo com as instruções do fabricante. Bibliotecas serão equalizadas, agrupadas e selecionadas por tamanho (100bp) antes do sequenciamento. As bibliotecas de Single-end-read (SE) serão sequenciadas na plataforma Illumina no CEFAP-USP.
O DNA de todas as amostras será extraído através do kit Qiagen DNeasy Blood & Tissue, seguindo o protocolo do fabricante. O DNA extraído terá sua concentração e qualidade observada através de espectrofotômetro (NanoDrop 2000). O marcador 16S rDNA será amplificado via reação de polimerase em cadeia (PCR) utilizando os primers universais 27F e 519R (LANE, 1991; TURNER et al., 1999) com as concentrações e ciclagens utilizadas em Zanotti et al. (2020). Os produtos da PCR serão purificados através de beads magnéticas (Agencourt AMPure XP) seguindo o protocolo do fabricante e eluídos em 50µl de TE (10mM Tris HCl, 1 mM EDTA, pH 8,0). A concentração de amplicons purificados será determinada utilizando Qubit dsDNA BR Assay Kit. O preparo das bibliotecas será feito através do NEBNext Ultra II FS DNA Library Prep Kit e, posteriormente, serão mantidas congeladas até o sequenciamento. Antes do sequenciamento, cada biblioteca será quantificada por meio do Qubit dsDNA BR Assay Kit e seu tamanho será verificado utilizando eletroforese capilar (Bioanalyzer High Sensitivity DNA chip). O sequenciamento será feito através da plataforma Illumina no Centro de Facilidades de Apoio à Pesquisa (CEFAP-USP).
Transcriptoma de Millepora alcicornis
O RNA de cada amostra será extraído utilizando o Trizol Reagent (Invitogen, USA) de acordo com Chomczynski & Sacchi (1987) e posteriormente dissolvido em água livre de RNase. A pureza do RNA será verificada utilizando espectrofotômetro (NanoDrop 2000) e a concentração será determinada utilizando o fluorímetro Qubit através do kit RNA HS (High Sensitivity) ou BR (Broad Range). Entre 100 à 700ng de RNA serão utilizados para preparar as bibliotecas de cDNA através do kit Illumina TruSeq Strand mRNA LT Sample Prep, de acordo com as instruções do fabricante. Bibliotecas serão equalizadas, agrupadas e selecionadas por tamanho (100bp) antes do sequenciamento. As bibliotecas de Single-end-read (SE) serão sequenciadas na plataforma Illumina no CEFAP-USP.
1. Revisão bibliográfica: 2021-2022
2. Aquisição das amostras: Junho 2021
3. Extração de DNA e RNA: Agosto e Setembro 2021
4. PCR rDNA 16S: Setembro e Outubro 2021
5. Análises de Bioinformática: entre segundo semestre de 2021 e primeiro semestre de 2022
6. Escrita da dissertação de mestrado: primeiro semestre de 2021 à segundo semestre de 2022
7. Defesa: segundo semestre de 2022
2. Aquisição das amostras: Junho 2021
3. Extração de DNA e RNA: Agosto e Setembro 2021
4. PCR rDNA 16S: Setembro e Outubro 2021
5. Análises de Bioinformática: entre segundo semestre de 2021 e primeiro semestre de 2022
6. Escrita da dissertação de mestrado: primeiro semestre de 2021 à segundo semestre de 2022
7. Defesa: segundo semestre de 2022
Solicitações
Laboratório de Biologia Molecular
Equipamentos para análises moleculares como termociclador, espectrofotômetro de
microvolumes, transiluminador, fonte e cuba de eletroforese, centrífuga, micropipetas.
microvolumes, transiluminador, fonte e cuba de eletroforese, centrífuga, micropipetas.
Não se aplica.
Não se aplica.
Não se aplica.
- Janeiro
- Fevereiro
- Março
- Abril
- Maio
- Junho
- Julho
- Agosto
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- Dezembro
20
1