Projeto de pesquisa

Serão realizados experimentos em laboratório e em campo.

Para os experimentos em laboratório, cinco colônias de M. hispida serão coletadas em dois diferentes habitats (raso e fundo) de Ilhabela (costeiro) e Alcatrazes (afastado). Medições de necrose tecidual/branqueamento e eficiência fotoquímica máxima (Fv/Fm) serão obtidas in situ através de registros fotográficos e do uso de um fluorímetro subaquático (Diving-PAM). Além disso, um fragmento de cada colônia (~2 cm2) será congelado (-20°C) imediatamente para quantificar a densidade de endossimbiontes. As colônias vivas serão então transportadas para as instalações do CEBIMar-USP. No laboratório, cada colônia será dividida em 18 fragmentos (~2 cm2; n = 360; 6 tratamentos x 3 tempos x 4 áreas x 5 réplicas) que serão aclimatados por 15 dias sob condições constantes de temperatura e luz. Posteriormente, serão submetidos a seis tratamentos considerando todas as combinações possíveis de temperatura nativa/ +3,5°C/ +6°C e níveis de luz baixos/altos. Os aumentos de temperatura serão feitos com aquecedores de vidro com uma taxa de aumento de + 0,5 °C a cada 12 horas. A temperatura e o estresse luminoso serão mantidos por 15 dias, determinando a fase de estresse, que será repetida após seis meses e um ano. A resposta dos corais será medida através de indicativos de tolerância térmica: branqueamento, eficiência da fotossíntese (Fv/Fm), densidade de endossimbiontes, estresse oxidativo e crescimento.

O desempenho de M. hispida também será medido ao longo de um experimento de campo, no qual serão realizados transplantes de fragmentos de corais (fatorial total) entre os habitats de águas rasas e fundas de Ilhabela (área costeira) e de Alcatrazes (afastado). Cinco colônias de cada um dos quatro habitats serão selecionadas e levadas às instalações do CEBIMar, onde serão divididas em 8 fragmentos (~ 2cm2; n = 200; 4 tratamentos de transplante + 1 controle in situ x 2 tempos x 4 áreas x 5 réplicas) que serão colados em placas de concreto. As posições dos corais nas placas serão aleatorizadas. Posteriormente, as placas serão levadas para o campo e devidamente posicionadas no micro-habitat de destino, onde serão também instalados sensores de temperatura para registro das variações de temperatura a cada três horas ao longo do experimento. Dois tratamentos serão aplicados para cada grupo de transplantados: (i) controle, corais transplantados provenientes do mesmo habitat; (ii) corais transplantados provenientes de outro micro-habitat; (iii) controle do transplante, corais não transplantados, porém submetidos a um estresse físico, simulando a fragmentação. Medições de necrose tecidual/branqueamento e eficiência fotoquímica máxima (Fv/Fm) serão obtidas antes da remoção e imediatamente após o transplante, através de registros fotográficos e do uso de um fluorímetro subaquático (Diving-PAM). O desempenho dos fragmentos transplantados será medido mensalmente através da área com branqueamento ou necrose, crescimento e da eficiência de fotossíntese. A cada seis meses fragmentos dos diferentes tratamentos serão removidos das placas, bem como um fragmento das colônias de controle de transplante, e levados ao laboratório e submetidos ao estresse através do aumento da temperatura (+ 6°C) e do nível de luz durante 15 dias (cf. fase de estresse do experimento de laboratório). Após os períodos de estresse, o branqueamento/necrose, crescimento e eficiência de fotossíntese serão novamente registrados; posteriormente os fragmentos serão congelados para estimativa de densidade de simbiontes e análises de estresse oxidativo.